一、引言

二、材料與方法

（一）兔成體成纖維細(xì)胞的分離與培養(yǎng)

1. 組織采集：選取健康成年兔，在無(wú)菌條件下取其耳部皮膚組織，迅速將組織置于含高濃度抗生素（如青霉素 500 U/mL、鏈霉素 500 μg/mL）的磷酸鹽緩沖液（PBS）中，以防止細(xì)菌和真菌污染，維持組織活性。

2. 細(xì)胞分離：將皮膚組織用 PBS 反復(fù)清洗后，剪成約 1 - 2 mm3 的微小組織塊。使用含有 0.25% 胰蛋白酶 - 0.02% 乙二胺四乙酸（EDTA）的消化液，在 37°C 水浴鍋中振蕩消化 30 - 60 分鐘，使成纖維細(xì)胞從組織塊中解離出來(lái)。

3. 細(xì)胞培養(yǎng)：消化結(jié)束后，加入含 10% 胎牛血清的 Dulbecco's Modified Eagle Medium（DMEM）培養(yǎng)基終止消化反應(yīng)，將細(xì)胞懸液通過(guò) 200 目濾網(wǎng)過(guò)濾，去除未消化的組織塊，收集濾液中的細(xì)胞。以適當(dāng)?shù)募?xì)胞密度（如 5×10?/cm2）接種于培養(yǎng)皿中，置于 37°C、5% CO?培養(yǎng)箱中培養(yǎng)，每 2 - 3 天更換一次培養(yǎng)基，待細(xì)胞生長(zhǎng)至 80% - 90% 融合時(shí)進(jìn)行傳代培養(yǎng)。

（二）外源基因與電穿孔試劑準(zhǔn)備

1. 外源基因獲?。焊鶕?jù)研究目的，選擇特定的外源基因（如綠色熒光蛋白基因 GFP 或具有特定功能的目的基因），通過(guò)基因克隆技術(shù)從含有該基因的模板（如質(zhì)粒文庫(kù)或基因合成片段）中擴(kuò)增出目的基因片段，利用聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)（PCR）進(jìn)行精確擴(kuò)增，并對(duì)擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行純化與鑒定，確?；蛐蛄械臏?zhǔn)確性。

2. 電穿孔試劑選擇：選用商業(yè)化的電穿孔專(zhuān)用緩沖液，如 Opti - MEM I Reduced Serum Medium 等，該緩沖液具有低離子強(qiáng)度、適宜的滲透壓等特性，能夠在電穿孔過(guò)程中減少對(duì)細(xì)胞的損傷并提高轉(zhuǎn)染效率。同時(shí)，準(zhǔn)備無(wú)菌的電擊杯，確保其潔凈度與良好的導(dǎo)電性，以保證電穿孔過(guò)程的順利進(jìn)行。

（三）電穿孔轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)操作

1. 細(xì)胞準(zhǔn)備：選取處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期、狀態(tài)良好且融合度在 60% - 70% 的兔成體成纖維細(xì)胞，用預(yù)冷的電穿孔緩沖液輕輕洗滌細(xì)胞 2 - 3 次，去除培養(yǎng)基中的血清成分，因?yàn)檠逯械牡鞍踪|(zhì)可能會(huì)干擾電穿孔過(guò)程中的電場(chǎng)作用與基因轉(zhuǎn)染。

2. 基因 - 細(xì)胞混合：將純化后的外源基因與適量的電穿孔緩沖液混合，調(diào)整基因濃度至合適范圍（如 1 - 10 μg/mL），然后將細(xì)胞懸液緩慢加入到基因溶液中，輕輕混勻，使細(xì)胞與外源基因充分接觸，避免產(chǎn)生氣泡，以防影響電穿孔效果。

3. 電穿孔參數(shù)設(shè)置：將細(xì)胞 - 基因混合液轉(zhuǎn)移至預(yù)冷的電擊杯中，設(shè)置電穿孔儀的參數(shù)。主要參數(shù)包括電壓（如 100 - 300 V）、脈沖寬度（如 10 - 50 ms）、脈沖次數(shù)（如 1 - 3 次）等。通過(guò)設(shè)計(jì)多組不同參數(shù)組合的實(shí)驗(yàn)，以確定在兔成體成纖維細(xì)胞中實(shí)現(xiàn)最佳轉(zhuǎn)染效率的電穿孔參數(shù)。在設(shè)置參數(shù)時(shí)，需綜合考慮細(xì)胞的耐受性與基因?qū)胄手g的平衡。

4. 電穿孔處理：在確認(rèn)電擊杯與電穿孔儀連接正確且參數(shù)設(shè)置無(wú)誤后，啟動(dòng)電穿孔程序，施加脈沖電場(chǎng)。電穿孔過(guò)程瞬間完成，之后迅速將電擊杯中的細(xì)胞懸液轉(zhuǎn)移至含 10% 胎牛血清的 DMEM 培養(yǎng)基中，輕輕混勻，接種于培養(yǎng)皿或培養(yǎng)瓶中，放回 37°C、5% CO?培養(yǎng)箱中培養(yǎng)，讓細(xì)胞在適宜環(huán)境中恢復(fù)并表達(dá)外源基因。

（四）轉(zhuǎn)染效率檢測(cè)

1. 熒光顯微鏡觀察：若轉(zhuǎn)染的外源基因是帶有熒光標(biāo)記的基因（如 GFP），在轉(zhuǎn)染后 24 - 48 小時(shí)，使用熒光顯微鏡觀察細(xì)胞的熒光表達(dá)情況。在觀察時(shí)，選取多個(gè)不同視野進(jìn)行拍照記錄，通過(guò)圖像分析軟件統(tǒng)計(jì)發(fā)出熒光的細(xì)胞數(shù)量占總細(xì)胞數(shù)量的比例，以此作為轉(zhuǎn)染效率的初步直觀評(píng)估指標(biāo)。

2. 流式細(xì)胞術(shù)分析：收集轉(zhuǎn)染后 48 小時(shí)的細(xì)胞，用預(yù)冷的 PBS 洗滌細(xì)胞 2 次，然后用適量的 PBS 重懸細(xì)胞，調(diào)整細(xì)胞濃度至合適范圍（如 1×10?/mL）。將細(xì)胞懸液加入流式細(xì)胞儀中，通過(guò)檢測(cè)熒光強(qiáng)度來(lái)區(qū)分轉(zhuǎn)染細(xì)胞與未轉(zhuǎn)染細(xì)胞，精確計(jì)算轉(zhuǎn)染效率。同時(shí)，還可利用流式細(xì)胞術(shù)分析轉(zhuǎn)染細(xì)胞的其他生物學(xué)特性，如細(xì)胞周期分布、細(xì)胞凋亡情況等，以全面了解電穿孔轉(zhuǎn)染對(duì)外源基因?qū)牒蠹?xì)胞狀態(tài)的影響。

3. 定量 PCR 檢測(cè)：提取轉(zhuǎn)染后細(xì)胞的總 RNA，使用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒將 RNA 逆轉(zhuǎn)錄為 cDNA。然后利用特異性引物對(duì)轉(zhuǎn)染的外源基因進(jìn)行定量 PCR 擴(kuò)增，同時(shí)以兔內(nèi)參基因（如 β - 肌動(dòng)蛋白基因）作為參照，通過(guò)比較外源基因與內(nèi)參基因的擴(kuò)增曲線(xiàn)與 Ct 值，計(jì)算出外源基因在細(xì)胞中的相對(duì)表達(dá)量，從基因轉(zhuǎn)錄水平準(zhǔn)確評(píng)估轉(zhuǎn)染效率與基因表達(dá)水平。

（五）轉(zhuǎn)染后細(xì)胞的生物學(xué)特性分析

1. 細(xì)胞增殖能力檢測(cè)：采用細(xì)胞計(jì)數(shù)法和 CCK - 8 試劑盒檢測(cè)轉(zhuǎn)染后兔成體成纖維細(xì)胞的增殖能力。在轉(zhuǎn)染后的不同時(shí)間點(diǎn)（如 24 小時(shí)、48 小時(shí)、72 小時(shí)等），對(duì)細(xì)胞進(jìn)行計(jì)數(shù)，繪制細(xì)胞生長(zhǎng)曲線(xiàn)。同時(shí)，將細(xì)胞接種于 96 孔板中，每孔加入適量的 CCK - 8 溶液，在 37°C 培養(yǎng)箱中孵育 2 - 4 小時(shí)后，使用酶標(biāo)儀測(cè)定 450 nm 處的吸光度值，根據(jù)吸光度值變化評(píng)估細(xì)胞增殖情況，分析電穿孔轉(zhuǎn)染及外源基因表達(dá)對(duì)細(xì)胞增殖的影響。

2. 細(xì)胞遷移能力檢測(cè)：利用劃痕實(shí)驗(yàn)和 Transwell 小室遷移實(shí)驗(yàn)檢測(cè)轉(zhuǎn)染后細(xì)胞的遷移能力。在劃痕實(shí)驗(yàn)中，將轉(zhuǎn)染后的細(xì)胞接種于培養(yǎng)皿中，待細(xì)胞生長(zhǎng)至融合狀態(tài)后，用無(wú)菌槍頭在細(xì)胞層上劃一道劃痕，然后用 PBS 清洗去除劃下的細(xì)胞碎片，加入無(wú)血清培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)，在不同時(shí)間點(diǎn)（如 0 小時(shí)、12 小時(shí)、24 小時(shí)等）觀察劃痕愈合情況并拍照記錄，通過(guò)測(cè)量劃痕寬度的變化計(jì)算細(xì)胞遷移速度。在 Transwell 小室遷移實(shí)驗(yàn)中，將轉(zhuǎn)染后的細(xì)胞接種于 Transwell 小室的上室，下室加入含 10% 胎牛血清的培養(yǎng)基作為趨化因子，培養(yǎng) 24 - 48 小時(shí)后，取出小室，用棉簽輕輕擦去上室未遷移的細(xì)胞，對(duì)下室遷移的細(xì)胞進(jìn)行固定、染色并計(jì)數(shù)，評(píng)估細(xì)胞的遷移能力變化。

3. 細(xì)胞凋亡檢測(cè)：采用 Annexin V - FITC/PI 雙染法檢測(cè)轉(zhuǎn)染后細(xì)胞的凋亡情況。收集轉(zhuǎn)染后不同時(shí)間點(diǎn)的細(xì)胞，用預(yù)冷的 PBS 洗滌細(xì)胞 2 次，然后按照 Annexin V - FITC/PI 凋亡檢測(cè)試劑盒的說(shuō)明書(shū)操作，將細(xì)胞與 Annexin V - FITC 和 PI 染料在避光條件下孵育 15 - 30 分鐘，最后用流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞凋亡率，分析電穿孔轉(zhuǎn)染及外源基因表達(dá)是否誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡，以評(píng)估轉(zhuǎn)染過(guò)程對(duì)細(xì)胞生存狀態(tài)的影響。

三、結(jié)果

（一）兔成體成纖維細(xì)胞的培養(yǎng)特性

1. 細(xì)胞形態(tài)：分離培養(yǎng)的兔成體成纖維細(xì)胞在顯微鏡下呈現(xiàn)典型的成纖維細(xì)胞形態(tài)，細(xì)胞呈長(zhǎng)梭形，有多個(gè)細(xì)長(zhǎng)的突起，細(xì)胞核呈橢圓形，位于細(xì)胞中央。細(xì)胞在培養(yǎng)過(guò)程中貼壁生長(zhǎng)，逐漸形成放射狀或漩渦狀的細(xì)胞群落，細(xì)胞之間連接緊密，生長(zhǎng)狀態(tài)良好。

2. 生長(zhǎng)曲線(xiàn)：通過(guò)連續(xù)多日的細(xì)胞計(jì)數(shù)繪制生長(zhǎng)曲線(xiàn)，結(jié)果顯示兔成體成纖維細(xì)胞在接種后的前 24 小時(shí)處于潛伏期，細(xì)胞數(shù)量略有增加；隨后進(jìn)入對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期，細(xì)胞增殖速度加快，在培養(yǎng) 3 - 5 天后達(dá)到生長(zhǎng)高峰；之后進(jìn)入平臺(tái)期，細(xì)胞數(shù)量趨于穩(wěn)定，增殖速度減緩。

（二）電穿孔轉(zhuǎn)染效率

1. 熒光顯微鏡觀察結(jié)果：在轉(zhuǎn)染后 24 小時(shí)，部分細(xì)胞開(kāi)始出現(xiàn)微弱的熒光信號(hào)，隨著時(shí)間推移到 48 小時(shí)，熒光強(qiáng)度逐漸增強(qiáng)且熒光細(xì)胞數(shù)量明顯增多。經(jīng)統(tǒng)計(jì)分析不同電穿孔參數(shù)下的熒光細(xì)胞比例，發(fā)現(xiàn)當(dāng)電壓為 200 V、脈沖寬度為 30 ms、脈沖次數(shù)為 2 次時(shí)，轉(zhuǎn)染效率高，可達(dá)到 [X]%（具體數(shù)值依實(shí)驗(yàn)而定）。

2. 流式細(xì)胞術(shù)分析結(jié)果：流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)結(jié)果與熒光顯微鏡觀察結(jié)果基本一致，在優(yōu)化后的電穿孔參數(shù)條件下，轉(zhuǎn)染細(xì)胞的熒光陽(yáng)性率較高，同時(shí)還發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)染過(guò)程對(duì)細(xì)胞周期分布有一定影響，部分細(xì)胞出現(xiàn) G?/M 期阻滯現(xiàn)象，但細(xì)胞凋亡率并未顯著增加，表明在該條件下細(xì)胞能夠較好地耐受電穿孔轉(zhuǎn)染操作。

3. 定量 PCR 檢測(cè)結(jié)果：定量 PCR 結(jié)果顯示，轉(zhuǎn)染后外源基因的相對(duì)表達(dá)量在轉(zhuǎn)染后 48 小時(shí)達(dá)到較高水平，且與轉(zhuǎn)染效率呈正相關(guān)。通過(guò)與內(nèi)參基因的對(duì)比分析，進(jìn)一步證實(shí)了在優(yōu)化參數(shù)下外源基因在兔成體成纖維細(xì)胞中的有效轉(zhuǎn)錄與表達(dá)。

（三）轉(zhuǎn)染后細(xì)胞的生物學(xué)特性分析結(jié)果

1. 細(xì)胞增殖能力：細(xì)胞計(jì)數(shù)法和 CCK - 8 實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明，轉(zhuǎn)染后細(xì)胞在短期內(nèi)（如 24 - 48 小時(shí)）增殖速度略有下降，但隨著時(shí)間推移逐漸恢復(fù)并接近未轉(zhuǎn)染細(xì)胞的增殖水平。這可能是由于電穿孔轉(zhuǎn)染過(guò)程對(duì)細(xì)胞造成了一定的損傷，在細(xì)胞修復(fù)后能夠繼續(xù)正常增殖，而外源基因的表達(dá)對(duì)細(xì)胞增殖未產(chǎn)生明顯的長(zhǎng)期抑制或促進(jìn)作用。

2. 細(xì)胞遷移能力：劃痕實(shí)驗(yàn)和 Transwell 小室遷移實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示，轉(zhuǎn)染特定外源基因后，兔成體成纖維細(xì)胞的遷移能力發(fā)生了改變。部分外源基因的導(dǎo)入促進(jìn)了細(xì)胞的遷移，表現(xiàn)為劃痕愈合速度加快和 Transwell 下室遷移細(xì)胞數(shù)量增多；而另一些外源基因則抑制了細(xì)胞遷移，具體變化與轉(zhuǎn)染的外源基因功能密切相關(guān)，表明外源基因的表達(dá)能夠調(diào)控兔成體成纖維細(xì)胞的遷移行為。

3. 細(xì)胞凋亡：Annexin V - FITC/PI 雙染法檢測(cè)結(jié)果顯示，在轉(zhuǎn)染后的早期（如 24 小時(shí)內(nèi)），有少量細(xì)胞發(fā)生凋亡，凋亡率約為 [Y]%（具體數(shù)值依實(shí)驗(yàn)而定），這可能是電穿孔過(guò)程中電場(chǎng)對(duì)細(xì)胞造成的應(yīng)激損傷所致。但隨著時(shí)間推移，細(xì)胞凋亡率逐漸穩(wěn)定并維持在較低水平，說(shuō)明在優(yōu)化的轉(zhuǎn)染條件下，細(xì)胞能夠有效應(yīng)對(duì)轉(zhuǎn)染帶來(lái)的應(yīng)激并維持正常的生存狀態(tài)。

四、討論